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Zimmer 303, Gebäude 1, Zhuke Biopark, 466 Jindu Road, Xuhui District, Shanghai
Shanghai Kunyun Biotechnologie Co., Ltd.
Zimmer 303, Gebäude 1, Zhuke Biopark, 466 Jindu Road, Xuhui District, Shanghai
1. Technische Einführung
Die RIP-Technik (RNA Immunoprecipitation, RNA Immunoprecipitation) ist eine kritische experimentelle Methode zur Untersuchung der Interaktion zwischen RNA und Proteinen in einer Zelle, die die Funktionsmechanismen von RNA-Bindenproteinen (RBP) bei der Posttranskriptionsregulation aufdecken kann.
II. Technische Grundsätze
RIP setzt den entsprechenden RNA-Proteinkomplex unter Verwendung von Antikörpern gegen das Zielprotein ab und macht die Ergebnisse biologisch überzeugender durch Isolierung, Reinigung, RT-PCR-Validierung oder Sequenzierung der an den Komplex gebundenen RNA.

III. Anwendungsszenarien
Basismechanismus: Analyse der Funktion von RNA-bindenden Proteinen (wie AGO2, Polycomb-Komplexe) und RNA-Regulationsnetzwerke.
Krankheitsstudien: Vergleichen Sie die Unterschiede in der RNA-Protein-Interaktion zwischen der Krankheit und der normalen Probe und finden Sie potenzielle Biomarker (z. B. Krebsverwandte lncRNA).
Medikamentenentwicklung: Bewertung der Wirkung von Medikamenten auf die RNA-Protein-Wechselwirkung und Beschleunigung des Zielscreenings.
4. Technische Vorteile
Höhere Empfindlichkeit: Eine schwache Interaktion zwischen RNA und Proteinen in niedriger Fülle kann nachgewiesen werden.
Breiter Dynamikbereich: Von einer kleinen Anzahl von Zellen (z. B. 5 x 107) bis hin zu komplexen Gewebeproben.
Multiomik-Kombination: Kombinieren Sie RNA-Seq, CLIP-Seq oder ChIP-Seq, um ein multidimensionales Regulationsnetzwerk aufzubauen.
V. Typ der Probe
Frische Zellen (Adhesive Zellen / Suspendenzellen), Gefrorene Zellen, Gefrorene Gewebe, Vernetzte Zellproben.
6. Probenbedürfnisse
Zellproben: ca. 1 x 10 ^ 7 Stück (kann 1 10cm-Scheibe oder in Form von suspendierten Zellen in einer Zentrifuge oder einer T75-Flasche gelagert werden);
Gefriertes Gewebe: ca. 70 mg; Vernetzte Zellprobe: Vernetzung der Zellen mit 1% Formaldehyd.
Probenvorbereitung & Transport
Lebende Zellproben: die nähere Entfernung kann frische Zellproben in einer Platte / T75-Flasche / Zentrifugerrohr mit regulärer Temperatur Express (spätestens am nächsten Tag) transportiert werden, die Stadt kann blinken oder persönlich geliefert werden, die Entfernung kann -80 ° C gefrorene Zelltrockneis transportiert werden;
Gewebeproben & Vernetzte Zellproben: -80 ° C Gefriert Trockeneis Transport.
8. Die zur Verfügung gestellten Reagenzien
Untersuchung mit ChIP-Antikörpern.
9. Versuchszyklus
1-2 Wochen (ohne Sequenzierung)
10. Andere
Bei der Auswahl der RT-PCR ist ein Ort für die Nachverfolgung erforderlich.
Spezifische Schritte zur Vernetzung von Formaldehyd-Zellen: 1. Fügen Sie eine endliche Konzentration von 1% Formaldehyd in die Zellschanne hinzu und inkubieren Sie 10 Minuten bei 37 ° C; Waschen Sie die Zellen zweimal mit eiskaltem DPBS, das [1 mM PMSF, 1 μg / ml Peptidase-Inhibitor und 1 μg / ml Pepstatin A] enthält. ② Kraben Sie die Zellen in 2 ml eisgekühltes DPBS mit Protease-Inhibitoren und übertragen sie in eine Zentrifuge, um sie einzufrieren.
