Mikrobielle Fläschen zur schnellen Detektion: Diagnostik

　　Mikrobielle schnelle ErkennungFlaschen: Diagnostik

1. Neben der Erkennung lebensfähiger Bakterien können mikrobielle Detektionsflaschen auch tote Bakterien erkennen?

Antwort: Nein, sie können keine toten Bakterien erkennen.

2. Können mikrobielle Detektionsflaschen anaerobe Bakterien erkennen?

Antwort: Der Nachweisbereich dieser Flaschen umfasst sowohl anaerobe Bakterien (wie Sulfitreduzierende Clostridia und *Clostridium perfringens*) als auch aerobe Bakterien.

Die in den Detektionsflaschen enthaltenen Reagenzien variieren je nach der spezifischen Art des angestrebten Mikroorganismen. Für anaerobe Bakterien wie Clostridium perfringens verwenden wir spezialisierte Reagenzien.

3. Welche spezifischen Detektionsmethoden werden in den Detektionsprinzipien dieser Flaschen eingesetzt?

Antwort: Kulturbasierte Methoden, enzymatische Methoden, immunologische Methoden und genetische Methoden.

4. In Bezug auf Frage 3 könnten Sie die Vorteile und Nachteile jeder dieser Methoden kurz beschreiben?

Antwort: Im Gegensatz zu herkömmlichen Kulturmedienmethoden, kolloidalen Goldassays, Enzymimmunassays oder PCR-Methoden – wenn sie isoliert eingesetzt werden – stellt das deutsche mikrobielle Nachweissystem eine umfassende Integration mehrerer Techniken dar. Die Verwendung eines einzelnen Erkennungsverfahrens allein stellt inhärente Nachteile dar; zum Beispiel:

PCR-Methoden erfordern spezialisiertes technisches Personal und teure Ausrüstung;

Kulturmedienmethoden beinhalten komplexe Betriebsverfahren;

Kolloidale Goldassays leiden unter geringer Empfindlichkeit;

Enzymimmunassays können keine ausreichende Spezifizität bei der Zielerfassung haben.

Die deutsche Serie von Fläschen zur schnellen mikrobiellen Detektion stellt eine synergistische Anwendung der oben genannten Methoden dar, die die Stärken jeder Technik effektiv nutzen und gleichzeitig ihre jeweiligen Einschränkungen kompensieren.

5. Wenn Sie die mikrobielle Detektion mit diesen Fläschen durchführen, sollte die Probe zuerst oder das sterile Wasser hinzugefügt werden?

Antwort: Jede Bestellung ist akzeptabel. 6. Ist eine mikrobielle Impfung der Probe in einer sterilen Umgebung erforderlich?

Antwort: Die Detektionsflasche arbeitet, indem sie spezifische Ziele erfasst und eine Kombination von Analysemethoden verwendet. Daher ist eine sterile Umgebung nicht strikt erforderlich (die meisten klinischen Teststellen sind in der Tat nicht sterile Umgebungen).

7. Kann die Detektionsflasche verwendet werden, um Oberflächenproben und feste Proben zu testen?

Antwort: Ja, es kann feste, flüssige und Oberflächenproben testen (für Oberflächenproben verwenden Sie den bereitgestellten Tübchen, der mit sterilem Wasser befeuchtet ist, um die Oberfläche zu tübchen). Pasteartige, halbfeste oder viskose Proben - wie z. B. Papiermasse - können ebenfalls getestet werden.

8. Bei der Prüfung von festen Proben mit der Detektionsflasche ist eine Vorbehandlung wie Mahlen oder Verdünnen erforderlich?

Antwort: Nein; einfach die Probe ohne Vorbearbeitung direkt in die Detektionsflasche legen.

9. Wie viel steriles Wasser ist für jeden Test erforderlich?

Antwort: Im Allgemeinen 11 ml. Bei der Prüfung von Flüssigkeitsproben oder Wasserproben wird empfohlen, 1 ml der Probe und 10 ml steriles Wasser hinzuzufügen.

10. Nach dem Zugabe der Probe und des sterilen Wassers ist der Schritt des "Schüttelns zur vollständigen Auflösung und Mischung" ein obligatorisches Verfahren für sowohl qualitative als auch quantitative Analysen?

Antwort: Ja, das Schütteln zur Mischung ist ein obligatorischer Schritt sowohl für die qualitative als auch für die quantitative Analyse.

11. Benötigen verschiedene Mikroorganismen die gleiche Inkubationstemperatur? Bitte geben Sie Beispiele.

Antwort: Nein, nicht. Die meisten Mikroorganismen erfordern 37 ° C - wie Total Viable Count, * Salmonella * und * Listeria * - während andere, wie * E. coli *, 44 ° C erfordern.

12. Wenn Testproben wie kalte Geschirr oder Eis, sollte die Inkubation bei einer niedrigeren Temperatur durchgeführt werden? Antwort: Es gibt keine Einschränkungen bezüglich der Temperatur der Probe selbst. Bei der Prüfung auf Mikroorganismen innerhalb der Probe müssen Sie sich jedoch strikt an die spezifische Inkubationstemperatur halten, die dem Zielmikroorganismen entspricht, wie in der Referenztabelle angegeben.

13. Wenn ich den Testprozess beschleunigen möchte, kann ich die Inkubationstemperatur höher setzen als die für den Zielmikroorganismen angegebene Temperatur?

Antwort: Nein. Sie müssen sich streng an das Referenztabelle halten.

14. Was ist das angegebene Probenvolumen/Gewicht, das in der Bedienungsanleitung gefordert wird?

Antwort: 0,1 g – 1,0 g oder 0,1 mL – 1,0 mL.

15. Wenn das tatsächliche Probenvolumen/Gewicht die angegebene Grenze überschreitet, unterscheiden sich die Testergebnisse? Werden die Ergebnisse (im Falle der quantitativen Analyse) künstlich erhöht erscheinen?

Antwort: Ob das Probenvolumen/Gewicht etwas höher oder niedriger als angegeben ist, werden die Ergebnisse der quantitativen Analyse nicht beeinflusst.

Grund: Traditionelle mikrobiologische Testmethoden - einschließlich etablierter Referenzmethoden (wie Kolonienzählung auf festen selektiven Medien) - zeigen eine inhärente "statistische Dispersion" von mehr als 50%. (Statistische Dispersion, auch als statistische Variabilität bekannt, bezieht sich auf die Ausbreitung einer Variablen oder Wahrscheinlichkeitsverteilung; häufige Beispiele sind Varianz, Standardabweichung und Interquartilbereich.) Zahlreiche Labore haben bestätigt, dass biologische Detektionsmethoden eine geringere statistische Dispersion und eine höhere Zuverlässigkeit im Vergleich zu anderen Testmethoden zeigen. Dennoch bleibt eine statistische Dispersion von 25-30% dem Prozess inhärent. Darüber hinaus muss auch die während der Probenahme eingeführte statistische Dispersion berücksichtigt werden – insbesondere bei festen Lebensmitteln (wie Fleischprodukten), bei denen sich Mikroorganismen häufig vermehren.

Folglich sind die Ergebnisse, die durch Zugabe einer Probe von 0,5 g erzielt werden, statistisch äquivalent zu denen, die durch Zugabe von 1,5 g erzielt werden (und sind äquivalent zu Ergebnissen, die mit jeder anderen Testmethode erzielt werden).

16. Kann eine geringe Dichte, lose Füllproben - wie Mehl - mit dem Standardverfahren getestet werden?

Antwort: Ja, sie können. 17. Bei dunkelfarbenen Proben wie Sojasauce stört die Farbe die Interpretation der qualitativen Testergebnisse? Haben Sie Empfehlungen?

Antwort: Wenn ein Detektionsinstrument zur quantitativen Analyse verwendet wird, tritt dieses Problem nicht auf. Wenn Sie jedoch qualitative Analysen ausschließlich durch visuelle Beobachtung von Farbänderungen durchführen:

Für dunkelfarbige Proben - wenn Sie besorgt sind, dass die Farbänderung mit bloßem Auge nicht eindeutig erkennbar ist - empfehlen wir, die Probe vor dem Test zu verdünnen. Erinnern Sie sich an die Antwort auf Frage 15? Die Ergebnisse, die durch Zugabe von 0,5 g oder 1,5 g Probe erzielt werden, sind statistisch äquivalent (und vergleichbar mit den Ergebnissen, die mit jeder anderen Methode erzielt werden).

Das gleiche Prinzip gilt für die Verdünnung.

18. Wenn eine Wasserprobe getestet wird, ist es immer noch notwendig, steriles Wasser hinzuzufügen? Wenn ja, wie viel?

Antwort: Wir empfehlen, 1 ml der Wasserprobe und 10 ml steriles Wasser hinzuzufügen.

19. Zeigen verschiedene Mikroorganismen die gleiche Anfangsfarbe und die gleiche positive Ergebnisfarbe? Bitte geben Sie Beispiele.

Antwort: Nein, sie unterscheiden sich.

Zum Beispiel zeigt *Salmonella* nach etwa 10 Minuten Inkubation in der Regel eine anfängliche Farbe von Rot, mit einem positiven Ergebnis, das durch Gelb angegeben wird. * Listeria *, auf der anderen Seite, präsentiert eine anfängliche Farbe von blau, mit einem positiven Ergebnis durch Gelb angegeben. Bitte lesen Sie die Referenzdiagramm für spezifische Details.

20. Funktioniert das mikrobielle Detektionsinstrument auch als Inkubator?

Antwort: Ja. Nachdem Sie die Detektionsflasche gründlich geschüttelt haben, legen Sie sie sofort in das Detektionsinstrument. Sobald Sie die spezifischen Mikroorganismeneinstellungen innerhalb der Software konfiguriert haben,

Das Instrument führt den Inkubationsprozess automatisch durch und erstellt einen quantitativen Analysebericht.

21. Funktioniert das mikrobielle Detektionsinstrument auch als Shaker/Oszillator?

Antwort: Nein, nicht. Sie müssen die Flasche manuell kräftig für 2-3 Minuten schütteln - oder einen mechanischen Shaker für etwa 20 Sekunden verwenden - bis der Inhalt vollständig gelöst oder gründlich vermischt ist.

22. Was ist das zugrunde liegende Prinzip hinter der Interpretation der Ergebnisse des mikrobiellen Detektionsinstruments? Antwort: Das mikrobielle Detektionsinstrument ist ein optischer Präzisionsleser. Unter Verwendung optischer Prinzipien erkennt es Farbänderungen in den Detektionsflaschen präzise und generiert genaue quantitative Analyseberichte.

23. Funktioniert das mikrobielle Erkennungsgerät mit einer externen Stromversorgung oder verfügt es über eine eingebaute wiederaufladbare Batterie?

Antwort: Es arbeitet an einer externen Stromversorgung.

24. Wie viele Detektionsflaschen kann der mikrobielle Detektor gleichzeitig und unabhängig analysieren?

Antwort: 8 Flaschen. Es führt eine gleichzeitige und unabhängige Detektion durch und generiert für jede Flasche einen separaten quantitativen Analysebericht.

25. Ist es notwendig, Analysesoftware auf einem Computer zu installieren, um quantitative Analysen mit dem mikrobiellen Detektor durchzuführen?

Antwort: Ja, Sie müssen die beigefügte Analysesoftware installieren.

26. Welche Computerbetriebssysteme sind mit dieser Analysesoftware kompatibel?

Antwort: XP, Vista und Windows 7.

27. Wenn der Detektor zum ersten Mal eingeschaltet wird, wie lange sollte man warten, bevor man mit dem nächsten Schritt fortgeht?

Antwort: Wenn Sie zum ersten Mal einschalten, ist es ratsam, etwa 40 Sekunden nach dem Start zu warten, bevor Sie den Betrieb fortsetzen.

28. Soll bei der quantitativen Analyse die Detektionsflasche nach gründlicher Mischung sofort in den Detektor gelegt werden oder sollte man einen Moment warten, bevor sie eingesetzt wird?

Antwort: Es sollte unmittelbar nach gründlicher Mischung in den Detektor gelegt werden.

29. Sobald eine Detektionsflasche in den Detektor eingesetzt wurde, welche Farbe wird das Anzeigelicht, das diesem Detektionsanschluss entspricht, nach dem Klick auf "Start" in der Analysesoftware auf die Softwareschnittstelle schalten?

Antwort: Nach dem Klick auf "Start" auf der Schnittstelle, die der spezifischen Erkennungsflasche entspricht, ändert sich das Anzeigelicht für diesen Port von grün auf rot, was darauf hindeutet, dass der Erkennungsprozess begonnen hat und derzeit im Gange ist.

30. Wenn der Detektionsprozess abgeschlossen ist, auf welche Farbe wird das Anzeigelicht, das diesem Port auf der Analysesoftwareschnittstelle entspricht, zurückkehren, um zu signalisieren, dass der Test beendet ist und eine neue Probe eingefügt werden kann?

Antwort: Während die Erkennung läuft, bleibt die Anzeige rot. Sobald die Erkennung abgeschlossen ist, wird die Anzeige grün. An dieser Stelle ist es zulässig, eine neue Detektionsflasche in den entsprechenden Anschluss am Detektor einzusetzen, um die nächste Testrunde zu beginnen. Die Dauer des Nachweisvorgangs wird entweder durch die tatsächliche Menge an vorhandenen Bakterien (bei hohem mikrobiellen Gehalt) oder durch die entsprechende Dauer bestimmt, die in der Referenztabelle angegeben ist (bei sehr niedrigem mikrobiellen Gehalt, bei dem die Testdauer die Zeit überschreiten sollte, die zur Nachweisung von 1 CFU erforderlich ist, wie in der Tabelle aufgeführt). 31. Was ist der Zusammenhang zwischen der Analysezeit, die für eine mikrobielle Detektionsflasche erforderlich ist, und dem mikrobiellen Gehalt in dieser Flasche?

Antwort: Es ist eine umgekehrte Beziehung. D.h. je höher der mikrobielle Gehalt, desto kürzer die entsprechende Detektionszeit; umgekehrt, je geringer der mikrobielle Gehalt, desto länger die entsprechende Detektionszeit.

Wenn der mikrobielle Gehalt in einer Probe zu hoch ist, zeigen die vom Detektor angezeigten quantitativen Analyseergebnisse innerhalb weniger Minuten oder sogar Sekunden erhebliche Schwankungen.

Wenn der mikrobielle Gehalt sehr niedrig ist (da das RVLM ein hochpräzises und empfindliches Instrument ist), kann ein erfahrener Anwender durch die Beobachtung von Datenänderungen über einen Zeitraum von mehreren Stunden (oder sogar nur wenigen Minuten) vorläufig bestimmen, ob der Zielmikrobielgehalt den spezifizierten Anforderungen entspricht.

32. Soll vor der Durchführung einer Analyse ein klares Versuchsziel festgelegt werden, um den spezifischen mikrobiellen Gehalt zu definieren, auf den der Nachweis ausgerichtet wird (insbesondere die in den nationalen Normen festgelegten zulässigen mikrobiellen Grenzwerte)?

Antwort: Das ist sehr empfehlenswert.

Beispielsweise geben sowohl nationale Normen (wie die GB-Serie) als auch internationale Normen (wie die EC-Serie) explizit (oder teilexplizit) die maximal zulässigen Mengen an mikrobieller Präsenz in verschiedenen Geflügel- und Tierprodukten fest.

Genauer gesagt besteht der erste Schritt bei der mikrobiellen Detektion darin, das Ziel der Analyse eindeutig zu definieren. Zum Beispiel sieht die internationale Norm EC 2073:2005 vor, dass der maximal zulässige Gehalt an *E. coli* in frischem Fleisch 10² CFU/g beträgt, was bedeutet, dass der Gehalt an *E. coli* pro Gramm frisches Fleisch 10² CFU nicht überschreiten darf. In diesem Szenario finden wir durch die Referenztabelle die Spalte entsprechend *E. coli* und finden den Wertlog(10² CFU) = 2. Diesen Wert (2) verfolgen wir dann innerhalb der E. coli-Zeile zurück in die erste Spalte, wo die entsprechende Zahl 14 ist. Somit kann - ob eine qualitative Analyse durch visuelle Inspektion oder eine quantitative Analyse mit dem Detektor durchgeführt wird - innerhalb eines maximalen Zeitrahmens von 14 Stunden ein strikt genaues Analyseresultat darüber erhalten werden, ob der *E. coli*-Gehalt in der Probe 10² CFU übersteigt. Wird eine Detektionsflasche zur quantitativen Analyse eingesetzt, kann ein erfahrener Labortechniker innerhalb sehr kurzer Zeit (z.B. etwa zehn bis fünfzehn Minuten) auf der Grundlage der in den quantitativen Analysedaten beobachteten dynamischen Veränderungen eine vorläufige Beurteilung des mikrobiellen Gehalts in der Flasche vornehmen.

33. Was ist das spezifische Ziel der Prüfung auf mikrobiellen Gehalt und welche Rolle spielt das Referenztabelle?

Antwort: Es dient als Grundlage für die Bestimmung der Standardreferenzparameter - insbesondere der Inkubationstemperatur, der Anfangsfarbe, der Analysedauer und der positiven Ergebnisfarbe - entsprechend dem spezifischen getesteten Mikroorganismen. Detaillierte Anweisungen zur Verwendung finden Sie in der Antwort auf die vorherige Frage.

34. Was ist eine CFU?

CFU steht für "colony-forming unit".

Es ist die englische Abkürzung für die Einheiten von mikrobiellen Clustern (Kolonien), die nach der Kultivierung erhalten werden.

Es dient als Messeinheit für Bakterien (insbesondere für sichtbare Bakterien) und Pilze. CFU (Kolonienbildende Einheit) bezieht sich auf ein Verfahren, bei dem ein bestimmtes Volumen verdünnter mikrobieller Suspension auf eine Agarplatte verteilt oder gegossen wird, wodurch sich einzelne mikrobielle Zellen über die Oberfläche verteilen können. Nach der Inkubation entwickelt sich jede lebensfähige Zelle zu einer separaten Kolonie. Im Gegensatz zu herkömmlichen Methoden, die ein Mikroskop verwenden, um einzelne mikrobielle Zellen zu zählen, misst die CFU-Methode in erster Linie die Menge an * sichtbaren * Bakterien - das heißt, diejenigen, die unter Standardbedingungen Kolonien bilden. Im Wesentlichen zeigt es die Anzahl der einzelnen mikrobiellen Zellen an, die pro Milliliter der Suspension vorhanden sind. Traditionell wurde diese Zählung einfach als "einzelne Zellen" oder "Zählungen" bezeichnet. Wir wissen jedoch, dass eine einzelne Kolonie nicht unbedingt von einem einzigen Bakterium erzeugt wird; Es kann stattdessen aus einem Bakterienhaufen (einem Bakterienaggregat) stammen. In solchen Fällen ist es nicht ganz richtig, sie einfach als "einzelne Zellen" zu bezeichnen; die genaue Terminologie ist "koloniebildende Einheit", abgekürzt als "CFU". Es ist analog zu den Begriffen "Kilogramm" und "Kilo" - sie sind lediglich verschiedene Namen für die gleiche Menge.

CFU steht für "koloniebildende Einheiten". CFU/ml bezieht sich auf die Gesamtzahl der Bakterienkolonien pro Milliliter Probe; Auch die Einheit CFU/g wird verwendet, entsprechend festen Kulturmedien.

35. Nehmen wir an, ich muss eine Probe testen, um festzustellen, ob ihre Koliformzahl 10^6 CFU/g oder 10^6 CFU/ml übersteigt.

Unter Verwendung der visuellen Beobachtung von Farbänderungen in der Flasche zur qualitativen Analyse beschreiben Sie bitte das Detektionsverfahren im Detail unter Bezug auf das "Inkubationstemperatur- und Colorimetrische Referenzdagramm".

Antwort: Schritt 1: Sample Addition

Fügen Sie die zu prüfende Probe (0,1-1,0 g oder 0,1-1,0 ml) hinzu und geben Sie anschließend 11 ml steriles Wasser hinzu. (Abhängig von der Art des Testmaterials - wenn es sich um eine Flüssigkeit handelt, wird empfohlen, 1 ml Probe und 10 ml steriles Wasser hinzuzufügen; der Unterschied ist vernachlässigbar.)

Schritt 2: Die Flasche schütteln, bis der Inhalt vollständig gelöst oder gründlich vermischt ist.

Wenn Sie manuell schütteln, schütteln Sie kräftig für etwa 2-3 Minuten; bei Verwendung eines mechanischen Shakers etwa 20 Sekunden schütteln.

Schritt 3: Interpretieren Sie die Testergebnisse zum richtigen Zeitpunkt.

(1) Für die visuelle qualitative Analyse: Konsultieren Sie das Referenzdagramm, um die spezifische Inkubationstemperatur, die Anfangsfarbe, die Detektionszeit, die positive Ergebnisfarbe und andere Parameter zu bestimmen, die den Coliformen entsprechen.

Inkubationstemperatur: Gemäß der Referenztabelle liegt dies bei 37°C.

Anfangsfarbe: Dies bezieht sich auf die Farbe, die auftritt, nachdem die Flasche gründlich geschüttelt und für etwa 10 Minuten in einen 37 ° C-Inkubator gelegt wurde. Gemäß dem Referenzdiagramm ist diese Farbe rot.

Detektionszeit: Unser Teststandard erfordert die Bestimmung, ob der Koliformgehalt 10 ^ 6 CFU/g oder 10 ^ 6 CFU/ml übersteigt. Entsprechend dem Referenzdiagramm finden Sie die Spalte, die Log 10 ^ 6 = 6 entspricht; Finden Sie die Zeile, die der Zahl 6 entspricht. Dies zeigt eine Detektionszeit von 6 Stunden an. Somit wird die Beobachtungszeit auf 6 Stunden eingestellt.

Positive Ergebnisfarbe: Gemäß dem Referenzdagramm ist die Farbe, die ein positives Ergebnis für Coliforme anzeigt, gelb. Sobald die notwendigen Informationen bestätigt wurden, legen Sie die gründlich gemischte Testflasche in einen Inkubator bei konstanter Temperatur von 37 °C und lassen Sie sie ungestört. Nach etwa 10 Minuten Inkubation werden Sie feststellen, dass die Testflasche die Anfangsfarbe zeigt, die der Koliformendetektion entspricht - rot. Fortsetzung der Inkubation; Wenn die Farbe gelb geworden ist, deutet dies darauf hin, dass der Koliformgehalt in der Probe 10^6 CFU/g oder 10^6 CFU/ml übersteigt und die Probe als nicht konform angesehen wird. Wenn die Farbe nicht gelb wird, sondern stattdessen bei der ursprünglichen roten Farbe bleibt oder auf einen Zwischenschatten wechselt, weist dies darauf hin, dass der Coliformgehalt in der Probe 10^6 CFU/g oder 10^6 CFU/ml nicht übersteigt und die Probe als konform angesehen wird.

(2) Bei Verwendung eines Detektors zur quantitativen Analyse:

Bitte lesen Sie die nächste Frage für diesen Schritt.

Schritt 4: Sterilisation

Vergessen Sie schließlich nicht, auf die Oberseite der Kappe der Testflasche zu drücken, um die Flasche zu sterilisieren. Nach dem Drücken der Kappe schütteln Sie die Flasche; Jetzt ist es sicher zu verwerfen.

Hinweis: Vermeiden Sie während experimenteller Verfahren die Berührung der Oberseite der Kappe der Testflasche, um eine versehentliche Sterilisation zu einem unangemessenen Zeitpunkt zu verhindern, was die Testergebnisse beeinträchtigen könnte.

36. Wenn die Frage 34 in Verbindung mit einem Detektor zur Durchführung einer genauen quantitativen Analyse durchgeführt wird, geben Sie bitte eine detaillierte Beschreibung der Betriebsschritte an.

Antwort: Wenn Sie einen Detektor für die quantitative Analyse verwenden:

Stellen Sie die gründlich gemischte Testflasche sofort in den Detektor. Starten Sie die Detektorsoftware und klicken Sie auf "Station", um die relevanten Informationen einzugeben (einschließlich: Name des Inspektors, Testtyp, Probe-ID, Client/Quelle, Testzeit usw.). Wählen Sie im Dropdown-Menü "Analysetyp" auf der Softwareoberfläche den spezifischen Typ des zu erkennenden Mikroorganismen aus. Klicken Sie auf "OK", dann auf "Start"; Das Anzeigelicht wird rot, was darauf hindeutet, dass das Gerät in die Analysephase eingetreten ist. Überwachen Sie die vom Detektor angezeigten quantitativen Analysedaten, um eine Bestimmung zu treffen.

37. Warum muss die Kappe der Detektionsflasche nicht nach unten gedrückt werden, bevor der Test abgeschlossen ist?

Antwort: Sterilisationsprozess. Die Flaschenkappe enthält ein Sterilisierungsmittel; Durch Pressen der Kappe wird dieses Mittel in die Flasche freigegeben, wo es mit dem internen Lösungsmittel reagiert, um den Sterilisationsprozess abzuschließen. Bitte verzichten Sie daher auf die Berührung der Kappe der Detektionsflasche während des Experiments.