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Thermo Fisher Scientific consumables for chromatography
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New Line Response - NY/T 4630-2025 Bestimmung von α-Milchprotein und beta-Milchglobulin in Milch und deren Erzeugnissen
Datum:2025-05-27Lesen Sie:0

Einleitung



Rohmilch ist reich an natürlichen aktiven Proteinen wie α-Lactalbumin, β-Lactoglobulin, Lactoferrin (LF), Immunoglobulin G (IgG) und Lactoperoxidase (LP), die eine wichtige Rolle bei der Bekämpfung von Bakterien und Vireninvasionen spielen, die Immunität stärken, Gewebereparation und Wachstumsentwicklung fördern. α-Milkprotein hat eine krebsbekämpfende, antibakterielle und antivirale Wirkung, reguliert die Immunfunktion und fördert die Laktosesynthese und die Milchsekretion; Beta-Lactoglobin hat Cholesterin senkende, antioxidative und antivirale Aktivität und fördert die Verdauungsabsorption von fettlöslichen Vitaminen. Verschiedene Methoden der Wärmebehandlung (Pasteurisierung, UHT-Sterilisierung, Verdampfungskonzentration und Sprühtrocknung usw.) können zu einer unterschiedlichen Degeneration von α-Milchprotein und beta-Milchglobulin in Milchprodukten führen, was ihren Nährwert und den Marktpreis beeinflusst.



Highlights des neuen Symer Fly-Umgangsprogramms


1.Dieser Test basiert auf NY/T 4630-2025 und den zugehörigen Gruppen- und Unternehmensstandards zur Bestimmung des Gehalts an alpha-Milchprotein und beta-Milchglobulin in pasteurisierter Milch, Ultrahochtemperatur-Sterilisierungsmilch und Säuglingspulver.NY/T 4630-2025 wird am 1. Mai 2025 in Kraft treten.

2. Dieser Test verwendet eine Chromatografie-Säule Accucore 150 C4 mit einer Partikelgröße von 2,6 μm mit einer niedrigeren Durchflussgeschwindigkeit (0,8 ml/minKleinere Probenvolumen (10 μL(und höhere Abtastfrequenz)10 HzSo dass die Spitzenform und die Trennung von α-Milkoprotein und β-Milkoprotein auf Standards zurückzuführen sind.

3. Um eine gute Spitzenform und Trennung zu erzielen, wurde die Vorbehandlung der Probe und die Flüssigchromatografiebedingungen angemessen optimiert. Bei einer Säulentemperatur von 60 °C und einer Durchflussgeschwindigkeit von 0,8 mL/min wurde eine gradiente Abwaschung mit 0,1% Trifluoressigsäure-Wasser - 0,1% Trifluoressigsäure-Nitril als Flussphase durchgeführt, wobei der maximale Druckwert des Systems nicht übersteigt.110 bar.

4. Die Testergebnisse zeigen: Alpha-Milkoprotein und Beta-Milkoprotein haben eine gute Spitzenform, eine ausgezeichnete Säulenwirkung und eine ausgezeichnete Trennungsgrade, bei derDie Trennung von alpha-Protein-Hauptspitzen und nahe gelegenen Störspitzen ist deutlich besser als im Standard-Spektrum. Standardlösung für die Mischung von α-Milkoprotein und β-Milkoprotein (100 μg / ml), die Retentionszeit von α-Milkoprotein beträgt 21,900 min, der Asymmetriefaktor 0,98, die theoretische Plattenzahl 321137; B-Lactoglobin B Retentionszeit von 24,747 min, Asymmetriefaktor 1,01, theoretische Plattenzahl 352451; Die Retentionszeit von beta-Lactoglobin A beträgt 25,467 min, der Asymmetriefaktor 1,00, die theoretische Anzahl der Platten 373359; Die Isolation von α-Milkprotein und β-Milkprotein B betrug 17,77 und die Isolation von β-Milkprotein B und β-Milkprotein A betrug 4,33; Vier aufeinanderfolgende Probenaufnahmen, die Retentionszeit und die RSD der Spitzenfläche sind weniger als 0,3%, die Methode ist gut reproduzierbar; Alpha-Protein-Standardlösung linearer Bereich 0,00-200 μg/ml, linearer Korrelationskoeffizient r2≥0,9997, linearer Bereich von 0,00-200 μg/ml, linearer Korrelationskoeffizient r2≥ 0,9991, gut linear.

5. In Versuchen zur Bestimmung des α- und beta-Milchglobulingehalts in Milchprodukten durch Gegenphase-Flüssigchromatographie,Der Accucore 150 C4Die Chromatografie-Säulen in Kombination mit dem effizienten Flüssigchromatografiesystem Vanquish Core zeigen eine gute Reproduzierbarkeit und eine ausgezeichnete Stabilität, wobei sowohl die Detektionsgrenzen als auch die Quantitätsgrenzen den Standardanforderungen entsprechen und für Milchprodukteunternehmen und Lebensmittelprüflabore zur Verfügung stehen.

6.In Bezug auf die entsprechende Literatur wurden in Gelpenetrationschromatographie zwei Tests zur Bestimmung des Gehalts an α-Milchprotein und beta-Milchglobulin in Milchprodukten in Reihe verwendet.MAbPac SEC-1 (300 Å, 5 μm, 7,8×300 mm)Die Volumenblockierungschromatografie-Säule, die gleichmäßig mit 6 M Gwandin als Flussphase gespült wird, ermöglicht die effektive Isolierung von α-Milkoprotein und β-Milkoprotein bei 280 nm.



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NY/T 4630-2025

Komplette Anwendungslösungen von Symer Fly


01

Vorbehandlung der Probe

1.1 Flüssigkeitsprobe: Tieftemperaturmilch (Rohmilch, Pasteurisierte Milch) / Normal-Temperaturmilch (UHT-Sterilisierungsmilch)

Wägen Sie die Probe 5 g (genau bis 0,1 mg) in einem 50 mL-Zentrifugerrohr mit Skala-Deckel, geben Sie eine angemessene Menge Wasser und wirbeln Sie 30 s, mit einer angemessenen Menge Essigsäure pH-Wert von 4,60 ± 0,05 einstellen, mit Wasser auf 25,0 mL kondensieren, wirbeln Sie 1 min, stehen Sie länger als 30 min, 12.000 rpm bei 4 ° C zentrifugieren 15 min. Entnehmen Sie die reine Flüssigkeit (gegebenenfalls mit ultrareinem Wasser verdünnt) und übertragen Sie die 0,2 μm hydrophile PTFE-Mikroporenfilterfilm (P/N: 42213-NPL), um die Flüssigkeit zu testen.

1.2 Feste Probe: Milchpulver (Milchpulver für Säuglinge und Kleinkinder)

Wägen Sie die Probe 2 g (genau bis zu 0,1 mg) in einem 50 mL-Zentrifugerrohr mit skaliertem Drehdeckel, geben Sie eine angemessene Menge Wasser und wirbeln Sie sie für 1 min, damit sie vollständig gelöst ist (wenn nötig mit warmem Wasser geöffnet werden kann), mit einer angemessenen Menge Essigsäure pH auf 4,60 ± 0,05 einstellen, mit Wasser auf 25,0 mL kondensieren, wirbeln Sie sie für 1 min und lassen Sie sie länger als 30 min stehen und 12.000 U/min bei 4 ° C zentrifugieren für 15 min. Entnehmen Sie die reine Flüssigkeit (gegebenenfalls mit ultrareinem Wasser verdünnt) und übertragen Sie die 0,2 μm hydrophile PTFE-Mikroporenfilterfilm (P/N: 42213-NPL), um die Flüssigkeit an Bord zu testen.



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02

Instrumentenkonfiguration und Chromatografiebedingungen

Thermo Scientific ™ Vanquish Core ™ Hocheffizientes Flüssigchromatografiesystem, Konfiguration: Pumpe Quaternary Pump C (VC-P20-A), Automatischer Probenahmer Split Sampler CT (VC-A12-A), Säulenthermokammer Column Compartment C (VC-C10-A), Detektor Diode Array Detector CG (VC-D11-A), Datenverarbeitung Chromeleon ™ 7.3

Chromatografie: Accucore 150 C4, 2,6 μm, 4,6 x 150 mm (P/N: 16526-154630)

Flussphase: A: 0,1% Trifluoressigsäure Wasser B: 0,1% Trifluoressigsäure Nitril

Durchflussgeschwindigkeit:0.8mL / min

Gradientenreinigungsverfahren:

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Probenmenge:10µL

Zylindertemperatur: 60 ℃

Detektor: DAD, Erfassungswellenlänge: 210 nm; Erfassungsfrequenz:10Hz; Spektralaufnahme: 190-400 nm



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03

Spektrum und Daten

3.1 Trennungsspektrum und Daten für Standardlösungen aus alpha- und beta-Lactoglobin-Mischungen

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Abbildung 1 Trennungsspektrum und Daten für Standardlösungen aus alpha-Milkoprotein- und beta-Milkoprotein-Mischung (100 μg/ml)(Klicken Sie auf das große Bild)

Wie in Abbildung 1 gezeigt, haben das Alpha-Milkoprotein und das Beta-Milkoprotein eine gute Spitzenform, eine ausgezeichnete Säulenwirkung und eine bessere Trennung als der Standard. α-Milkprotein Retentionszeit von 21,900 min, Asymmetrie-Faktor 0,98, theoretische Anzahl der Türme 321137; B-Lactoglobin B Retentionszeit von 24,747 min, Asymmetriefaktor 1,01, theoretische Plattenzahl 352451; Die Retentionszeit von beta-Lactoglobin A beträgt 25,467 min, der Asymmetriefaktor 1,00, die theoretische Anzahl der Türme 373359. Die Isolationsgrad von α-Milkoprotein und β-Milkoprotein B betrug 17,77 und die Isolationsgrad von β-Milkoprotein B und β-Milkoprotein A betrug 4,33.


3.2 Alpha-Milkoprotein und Beta-Milkoglobin Single Standard-Lösung Positionierung Überlagerung Spektrum

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Abbildung 2 Alpha-Milkoprotein und Beta-Milkoprotein Single-Standard-Lösung Positionierungsüberlagerungsspektrum (Klicken, um das große Bild zu sehen)

Monolineare Positionierungschromatografie und Spektrografie von α-Milkoprotein und β-Milkoprotein, wie in Abbildung 2 gezeigt, zeigen α-Milkoprotein, β-Milkoprotein B und β-Milkoprotein A charakteristische Absorption bei 200 nm und 279 nm.


3.3 Kontinuierliche Probenauflage von Standardlösungen für alpha-Milkoprotein- und beta-Milkoprotein-Mischungen

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Abbildung 3 Spektrum der kontinuierlichen Probenauflage der Standardlösung für eine alpha-Milkoprotein- und beta-Milkoprotein-Mischung (100 μg/ml, n=4) (Klicken, um das große Bild zu sehen)

Die Standardlösung für eine alpha-Milkoprotein- und beta-Milkoprotein-Mischung (100 μg/ml) wurde vier Mal in Folge probiert, wobei die Retentionszeit und die RSD der Spitzenfläche weniger als 0,3% waren, und die Methode gut reproduzierbar war, und das Trennungsspektrum und die Daten wurden in Abbildung 3 detailliert.


3.4 Spektrum der Überlagerung der Kalibrierkurven für die Standardlösung von α-Milkoprotein und beta-Milkoprotein

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Abbildung 4 Spektrum der Überlagerung der Kalibrierkurven der Standardlösung von α-Milkoprotein und β-Milkoprotein (0,00/40,0/80,0/120/160/200 μg/ml) (Klicken, um das große Bild zu sehen)

Rohmilch und pasteurisierte Milch haben in der Regel hohe Anteile an α-Milkoprotein und β-Lactoglobin, weshalb der lineare Bereich empfohlen wurde, der von den Gruppenkriterien T/TDSTIA 002-2021 und T/TDSTIA 007-2019 empfohlen wird. Wie in Abbildung 4 gezeigt, ist die Standardlösung von α-Milkprotein linear im Bereich von 0,00-200 μg/ml mit linearem Korrelationskoeffizienten r2≥0,9997, linearer Bereich von 0,00-200 μg/ml, linearer Korrelationskoeffizient r2≥ 0,9991, gut linear. Wobei β-Lactoglobin B und β-Lactoglobin A mit Verbindungsgruppen quantifiziert werden.


3.5 Alpha-Milkoprotein und Beta-Milkoprotein-Standardlösung (40,0 μg/ml) und Überlagerungsspektrum der Leerlösung

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Abbildung 5 Spektrum der Überlagerung von α-Milkoprotein- und β-Milkoprotein-Standardlösungen (40,0 μg/ml) mit leeren Lösungen (Klicken, um das große Bild zu sehen)

Bei einem Probenvolumen von 10 uL wurden die Spitzenhöhen von α-Milkoprotein und β-Milkoprotein (40,0 μg/mL) als S ausgewählt, wobei der Durchschnittswert des Matrixgeräuschs von 22,5 bis 24,0 min N war und das Signal-Rausch-Verhältnis von α-Milkoprotein, β-Milkoprotein B und β-Milkoprotein A 523,3, 139,9 und 133,6 betrug, wie in Abbildung 5 gezeigt. Zusammen mit der Optimierung des Probenvolumens kann daher die Empfindlichkeit der alpha- und beta-Lactoglobin-Messmethoden auch die Anforderungen von 1,00 μg/mL in NY/T 4630-2025 erfüllen.


3.6 Spektrum der Überlagerung von Standardlösungen für alpha-Milchprotein- und beta-Milchglobulingemischte mit pasteurisierten Milchprobenlösungen

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Abbildung 6 Überlagerungsspektrum der Standardlösung für eine alpha-Milchprotein- und beta-Milchglobulinmischung mit einer pasteurisierten Milchprobenlösung (Klicken, um das große Bild zu sehen)

Neben dem Whey-Protein enthält die Milch eine hohe Menge an Kasein und anderen Proteinen, die die Messung von α-Milchprotein und beta-Milchglobulin stören können. Nach der Vorbehandlung der pasteurisierten Milchprobe mit pH-Regulierung, Hochgeschwindigkeitszentrifugation usw. bleibt das unveränderte α-Milchprotein und beta-Milchglobulin in der Oberflüssigkeit, deren Isolationsspitzentyp besser ist, die Ausgangslinie glatt ist und der Spitzentyp nicht stört wird, wie in Abbildung 6 gezeigt. Bei der Quantifizierung der pasteurisierten Milchprobe wurden alpha-Milchproteine von 1033,6 mg/kg und beta-Milchglobuline von 2949,0 mg/kg gemessen, was im Wesentlichen den Etikettenwerten entspricht.


3.7 Spektrum und Daten für die Trennung von Pasteurisierter Milch (Hypertemperaturmilch), Hypertemperaturmilch (Normalmilch) und Milchpulverformulierungen für Säuglinge und Kleinkinder

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Abbildung 7 Separationsspektrum und Daten für pasteurisierte Milchproben

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Abbildung 8 Separationsspektrum und Daten für Probenlösungen von Ultrahochtemperatur-Sterilisierungsmilch (Normalmilch)

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Abbildung 9 Spektrum und Daten zur Trennung von Milchpulverlösungen für Säuglinge und Kleinkinder

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Alpha- und β-Lactoglobin sind temperaturempfindlich, und hohe Temperaturen zerstören ihre chemische Struktur und biologische Aktivität. Wie in Abbildungen 7-9 gezeigt, gibt es keine offensichtlichen Störspitzen in der Nähe von alpha-Milch- und beta-Milchglobulin-Zielspitzen in pasteurisierter Milch (Kryomilch), genaue Bestimmung und Quantifizierung, Rohmilch, pasteurisierte Milch und andere Proben gelten für die Methode 1 NY/T 4630-2025; Ultra-Temperatur-Sterilisierungsmilch (Normal-Temperatur-Milch) und Säuglingsmilchpulver in der Nähe des beta-Lactoglobin-Zielspitzes gibt es offensichtliche Störungsspitzen, die die qualitativen und quantitativen Ergebnisse ernsthaft beeinflussen, das α-Lactoglobin ist relativ klein beeinflusst, Ultra-Temperatur-Sterilisierungsmilch, Säuglingsmilchpulver und andere Proben gelten nicht für die erste Methode NY / T 4630-2025, die zweite Methode wird empfohlen.


3.8 Gel-Penetration-Chromatografie der Standardlösung von alpha-Lactoprotein und beta-Lactoglobin (Methode 2)

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Abbildung 10 Gel-Penetration-Chromatografie für die Standardlösung von α-Milkoprotein und β-Lactoglobin (500 mg/L) (Klicken, um das große Bild zu sehen)

Anhand des in der Zeitschrift „China Milch Industry“ veröffentlichten Artikels „Volumenblockierungschromatografie zur Bestimmung des Gehalts an alpha-Milchproteinen in Milch, Milchpulver und Whey“ (2022) wurden zwei MAbPac SEC-1 (300 Å, 5 μm, 7,8 x 300 mm) Volumenblockierungschromatografie-Säulen in Reihe verwendet, die gleichmäßig mit 6 M Hydrochlorid als Flussphase gespült wurden, um alpha-Milchproteine und beta-Milchglobuline bei 280 nm effektiv zu isolieren (wie in Abbildung 10 gezeigt) und 60 Chargen von Milch, Milchpulver und Whey zu testen, um die Anwendbarkeit und Stabilität der Methode zu überprüfen.

Die Spezifikation der MAbPac SEC-17.8×300mm, Die empfohlene Durchflussgeschwindigkeit beträgt 0,5 mL/min, wodurch Lösungsmitteleinsparungen unter Gewährleistung der Trennung erzielt werden können.4.0×300mm Spezifikation für die Chromatografie, empfohlene Durchflussgeschwindigkeit 0,2 mL/min (gegebenenfalls angepasst).

04

NY/T 4630-2025 Empfehlungen für chromatografische Verbrauchsmaterialien

4.1 Methode I Gegenphasenflüssige Chromatographie Analyse- und Schutzsäulen

Accucore 150 C4, 2,6 μm, 4,6×150 mm

(Postnummer: 16526-154630)

Accucore 150 C4 Schutzkolumnenkern, 2,6 μm, 4,0 x 10 mm, 4 pk

(Postnummer: 16526-014005)

Uniguard direkt anschließbare Schutzsäulenhülle

(P/N: 850-00)

4.2 Zweite Methode Gel-Penetration-Chromatographie Analyse- und Schutzsäulen

Durchflussgeschwindigkeit:0.5mL / min

保护柱: MAbPac SEC-1, 5 μm, 300 Å, 4,0×50 mm

(Postnummer: 074697)

分析柱: MAbPac SEC-1, 5 μm, 300 Å, 7,8×300 mm

(Postnummer: 088460)

分析柱: MAbPac SEC-1, 5 μm, 300 Å, 7,8×300 mm

(Postnummer: 088460)

Durchflussgeschwindigkeit:0.2mL / min

保护柱: MAbPac SEC-1, 5 μm, 300 Å, 4,0×50 mm

(Postnummer: 074697)

分析柱: MAbPac SEC-1, 5 μm, 300 Å, 4,0×300 mm

(Postnummer: 074696)

分析柱: MAbPac SEC-1, 5 μm, 300 Å, 4,0×300 mm

(Postnummer: 074696)

4.3 Vorbehandlung der Probe

Titan 3 hydrophiler PTFE-Nadelfilter, 17 mm, 0,2 μm, 200/pk

(P/N: 42213-NPL)



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05

Referenzen

[1] NY/T 4630-2025 Bestimmung von α-Milchprotein und β-Milchglobulin in Milch und deren Erzeugnissen

[2] T/TDSTIA 026-2022 Bestimmung von α-Milchprotein und β-Lactoglobin in Säuglingsmilchpulver - Gelpenetrationschromatographie

[3] T/TDSTIA 002-2021 Bestimmung von α-Milchproteinen in Milch und Milchprodukten

[4] T/CSIQ 77001-2020 Bestimmung des alpha-Milchproteingehalts in Milchprodukten

[5] T/TDSTIA 007-2019 Bestimmung von β-Lactoglobin in Milch und Milchprodukten Flüssigchromatographie

[6] T/SHNX 001-2025 Bestimmung von Lacteferrin, α-Milchprotein und beta-Milchglobulin in Rohmilch

[7] Duju Gei, Wang Liang, Lin Yi Kang. Bestimmung des Gehalts an alpha-Milchproteinen in Milch, Milchpulver und Molkenpulver durch Volumenblockierungschromatografie [J].China Milchindustrie, 2022,50(04):46-51.