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Chemische Leuchtmittel EZ ECL Flyg (Flyg-Klasse)

VerhandlungsfähigAktualisieren am05/06
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Übersicht

EZ ECL Flyg ist ein derzeit hochempfindliches Enhanced Chemical Luminescence (ECL) HRP-Substrat, das den Anwendern hilft, einen Flyg-Grade-Proteindetekt (110-13, -14g) während der Immundabdruck-Analyse zu erreichen, was eine extreme Antikörpersparenheit ermöglicht.

Produktdetails

EZ ECL FlugChemische Leuchtmittel (Feiger-Klasse)

Produktbeschreibung

EZ ECL FliegenChemische Leuchtmittel sind eine derzeit* hochempfindliche verbesserte chemische Leuchtmittel(ECL) HRPSubstrat, das den Anwendern hilft, eine niedrige Proteinqualität bei der Immundabdruck-Analyse zu erkennen(<1×10-13-14g)Sehr Antikörper sparend.West FemoSubstrat kann für die Verwendung von Moringa Peroxidase(HRP)Das Immundabdruck-Experiment von Koppelstoffen liefert helle Signale und eine Feiger-Ebene-Erkennungsempfindlichkeit. DieECLDas Substrat ist kompatibel mit einer Vielzahl von Membranen, geschlossenen Flüssigkeiten und einer Vielzahl von Antikörper-Verdünnungen, um die Anforderungen der Immunddruckanwendungen der Benutzer mit ausgezeichneter Leistung, Vielseitigkeit und hohem Preis-Leistungsverhältnis zu erfüllen.

West FemoEigenschaften des Untergrundes

Hohe EmpfindlichkeitDetektion von Nitrocellulose-Membranen oderPVDFProteinbänder auf der Membran.

Lange Signaldauer: Unter optimierten Bedingungen kann das durch das Substrat inkubierte Druckband kontinuierlich ausgegeben werden6~8 hErkennbares Lichtsignal.

Empfohlene Verdünnungskonzentration

Anti-Konzentration: empfehlen1 µg/mlSpeicherflüssigkeit verdünnen1:5,000bis1:100,000doppelt

Zweite Konzentration: empfehlen1 µg/mlSpeicherflüssigkeit verdünnen1:100,000bis1:500,000doppelt

Bestellungsinformationen

Produktname

Warennummer

Spezifikation

Chemische Leuchtmittel EZ ECL Flyg (Flyg-Klasse)

AP34L064

100 ml

Chemische Leuchtmittel EZ ECL Flyg (Flyg-Klasse)

AP34L065

500 ml

Produktkomponenten

Komponenten

AP34L064

AP34L065

Flick-KlasseA Flüssigkeit

50 ml

250 ml

Flick-KlasseB Flüssigkeit

50 ml

250 ml

Transport und Aufbewahrung

Blaues Eis transportiert.4℃ Lichtschutz Trocknung, Gültigkeitsdauer12Monat.

Gebrauchsanweisung

1. Entfernen Sie die Abdruckfolie und fügen Sie die geeignete Verschlussflüssigkeit zur Inkubation im Gewächshaus hinzu20 bis 60 MinutenGleichzeitig oscillieren, um die nicht spezifischen Protein-Bindungsstellen auf der Membran zu schließen.

2. Entfernen Sie die Membran aus der geschlossenen Flüssigkeit und inkubieren Sie sie mit einer Arbeitsflüssigkeit im Gewächshaus1 Stundegleichzeitig schwingung; oder in28℃ über Nacht inkubieren, ohne zu schwingen.

3. Fügen Sie eine ausreichende Menge an Waschpuffer auf die Membran, um sicherzustellen, dass der Puffer die Membran* vollständig abdeckt. Oszillationsinkubation ≥5 MinutenWechseln Sie den Waschpuffer und wiederholen Sie diesen Schritt.4~6Zweimal. Die Erhöhung des Volumens des Wäschepuffers, der Anzahl der Wäsche und der Wäschezeit hilft, das Hintergrundsignal zu verringern.[Hinweis]:① Vor der Inkubation verbessert eine kurze Waschung der Membran in einem Waschpuffer die Wascheffizienz. ② wie zuvor empfohlenHRPMarkierung der zweitmäßigen Anti-Verdünnung ist sehr wichtig.

4. gebenHRPMarkierte binäre Arbeitsflüssigkeit mit Membran inkubiert im Gewächshaus1 StundeGleichzeitig oscillieren.

5. Wiederholung der Schritte3zur Entfernung der nicht kombiniertenHRPKennzeichnung 2.[Hinweis]:Membran undHRPMarkierungen müssen nach der Inkubation gründlich * gewaschen werden.

6. gebenALösungen undBFlüssigkeit und andere Verhältnisse vermischt und bereitet zu Arbeitsflüssigkeit. Jedercm2Membran Verwendung0.01~0.1 mLArbeitsflüssigkeit, die im Gewächshaus stabilisierbar ist8 Stunden[Hinweis]:Die Exposition an Sonnenlicht oder anderem starken Licht kann die Arbeitsflüssigkeit beschädigen. Für ein optimales Ergebnis bewahren Sie diese Arbeitsflüssigkeit in einer Bernsteinflasche mit Licht; Die übliche Beleuchtung im Labor schädigt die Arbeitsflüssigkeit nicht.

7. Inkubieren der Druckfolie in der Arbeitsflüssigkeit5 MinutenEntfernen Sie die Druckfolie aus der Arbeitsflüssigkeit und legen Sie sie in ein Kunststoffblatt oder in ein sauberes Kunststoffpapier (Membran), saugen Sie die überschüssige Flüssigkeit mit einem Blatt Wassersaugpapier ab und drücken Sie die Blase vorsichtig zwischen dem Druck und dem Kunststoffpapier aus.

8. Legen Sie die in Kunststoffpapier (Film) verpackte Druckfolie in eine Film-Dunkelbox mit dem Protein-Gesicht nach oben und schalten Sie alle Lichter aus, mit Ausnahme der Lichter, die für die Belichtung des Films geeignet sind (z. B. rote Sicherheitslampen).[Hinweis]:Der Film muss während der Belichtung trocken bleiben. ② Stellen Sie sicher, dass überschüssige Substrate von der Folie und dem Kunststoffpapier * vollständig entfernt werden; Handschuhe während der gesamten Filmbearbeitung verwenden.

9. gebenXDer Lichtfilm wird über die Folie gelegt. Empfehlung * eine Exposition60 sAnschließend kann die Belichtungszeit für ein optimales Ergebnis angepasst werden. Chemische Leuchtreaktionen vor der Inkubation des Substrats5 bis 30 MinutenDie Periode ist * stark. Diese Reaktion kann mehrere Stunden dauern, aber die Intensität nimmt mit der Zeit ab, und wenn ein Substrat nach längerer Exposition nach Inkubation ausgesetzt ist, kann die Expositionszeit verlängert werden, um ein stärkeres Signal zu erhalten. Bei Verwendung von Phosphorspeichergeräten (z.B.Bio-Radmolekulares Bildgebersystem) oderCCDDie Kamera kann eine längere Belichtungszeit benötigen.[Hinweis]:Jede Bewegung zwischen Folie und Folie kann künstliche, nicht spezifische Signale auf der Folie verursachen.

10. Verwenden Sie geeignete Spektrifizierungsmittel und Fixierungsmittel zur Spektrifizierung des Films. Wenn das Signal zu stark ist, wird die Belichtungszeit verkürzt oder die Abdruckmembran entfernt und die Antikörperkonzentration erneut untersucht.

Hinweise

1. Dieses Produkt wird in wissenschaftlichen experimentellen Forschungen verwendet und darf nicht in klinischen Diagnosen, Behandlungen und anderen Bereichen verwendet werden.

2. Um optimale Ergebnisse zu erzielen, müssen alle Komponenten des Systems optimiert werden, einschließlich Probenvolumen, I- und II-Konzentrationen sowie Membran- und geschlossene Reagenzien.

3. Verwenden Sie dieses Produkt im Vergleich zur FällungHRPDie erforderliche Antikörper-Konzentration für die Substrationsprüfung ist gering. Um die Antikörperkonzentration zu optimieren, führen Sie eine systematische Punktabdruckanalyse durch.

4. Kein einziges geschlossenes Reagenz ist für alle Systeme optimal, daher ist es wichtig, den am besten geeigneten geschlossenen Puffer für jedes Immundabdruck-Testsystem zu finden. Ein geschlossenes Reagenz kann mit Antikörpern kreuzreagieren, was zu unspezifischen Signalen führt. Der geschlossene Puffer beeinflusst auch die Empfindlichkeit des Systems. Bei der Umstellung von einem Substrat auf ein anderes kann es manchmal zu einer Signalverschwächung oder einer erhöhten Hintergrundlage kommen, möglicherweise weil der geschlossene Puffer nicht für ein neues Detektionssystem geeignet ist.

5. Verwendung von Affinitäten/Vermeiden Sie bei Biotin-Testsystemen die Verwendung von Milch als geschlossenes Reagenz, da Milch unbestimmte Mengen an endogenen Biotinen enthält, die zu hohen Hintergrundsignalen führen können.

6. Sichern Sie, dass das Volumen des Waschpuffers, des geschlossenen Puffers, der Antikörperlösung und der Substrat-Arbeitsflüssigkeit verwendet wird, um sicherzustellen, dass die Druckfolie während des gesamten Experiments* mit Flüssigkeit bedeckt ist, um eine Trocknung der Membran zu vermeiden. Eine Erhöhung des Einsatzes von geschlossenen Puffern und Waschpuffern reduziert das Signal der Unspezifizität.

7. Um * optimale Ergebnisse zu erzielen, verwenden Sie bitte ein Schaukelbett während der Inkubationsschritte.

8. gebenTween20(Endkonzentration0.05~0.1%)Fügen Sie einen geschlossenen Puffer und eine verdünnte Antikörperlösung hinzu, um das nicht spezifische Signal zu verringern. Verwenden Sie qualitativ hochwertige Produkte wie Entfernungsmittel. Es wird in einer Ampulle mit einem niedrigen Gehalt an Peroxiden und anderen Verunreinigungen gelagert.

9. Verwenden Sie Natrium nicht als Konservierungsmittel für Puffer. Natrium-Stickstoff istHRPUnterdrückung.

10. Vermeiden Sie den direkten Kontakt der Hand mit der Membran, während des Experiments sollten Handschuhe oder saubere Pinzetten verwendet werden.

11. Alle Geräte müssen sauber und frei von Fremdstoffen sein. Metallgeräte (z. B. Scheren) dürfen keine sichtbaren Rostflächen aufweisen. Rostflächen können zu Fleckenbildung und hohem Hintergrund führen.

12. Die Arbeitsflüssigkeit ist bei Raumtemperatur stabil8 Stunden. Untergrund kann bei Tageslicht oder einem anderen starken Licht beschädigt werden, um * gute Ergebnisse zu erzielen, bewahren Sie die Untergrund-Arbeitsflüssigkeit in einer Bernsteinflasche und vermeiden Sie eine langfristige Exposition bei starkem Licht, kurzfristige Exposition der Laborbeleuchtung beschädigt die Arbeitsflüssigkeit nicht.

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