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Meigu Molecular Instrument (Shanghai) Co., Ltd
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3D-Bildgebung für die Charakterisierung eines gedruckten Eierstockkrebsmodells
Datum:2023-03-17Lesen Sie:0

Einführung
3D-Biodruck wird als funktionale 3D-Strukturen oder künstliche Gewebemodelle von Zellen und biokompatiblen Materialien definiert. 1 Diese Technologie hat das Gebiet des Tissue Engineering verändert und es ermöglicht, komplexe, vordefinierte Strukturen zu erstellen, während die Wiederholbarkeit gewährleistet ist. Mehrere auf 3D-Biodruck basierende Methoden wurden für die Entwicklung verschiedener Gewebe wie Knorpel, Knochen und Hautregeneration berichtet. Diese Technik wurde auch verwendet, um neue präklinische Tumormodelle zu erstellen. Tatsächlich, als 2D-Zellkultur-Modelle aufgrund des Mangels an Vorhersagbarkeit zunehmend in Frage gestellt werden, hat sich 3D-Biodruck zu einer alternativen Methode entwickelt, um dieses Problem zu umgehen, indem es verschiedene Zellen und extrazelluläre Matrix-Derivate, Modellierung / Demonstration der Tumor-Mikroumgebung (TME) verarbeitet. Viele auf 3D-Biodruck basierende Tumormodelle umfassen Lungenkrebs, Brustkrebs und Glioblastoma. 7 Diese Modelle zeigen Vorteile im Design, Flexibilität und Wiederholbarkeit im Vergleich zu anderen Strategien wie Zellkugeln und Organoide. Eierstockkrebs ist ein großes Problem der öffentlichen Gesundheit, und 3D-Biodruck wird immer noch als Modell für Eierstockkrebs untersucht. Bei solchen Tumortypen wurde gezeigt, dass die Krebsassoziierten Fibrozellen (CAF) eng mit den Krebszellen interagieren und eine Hauptrolle bei der Krebsinvasion und der Medikamentressistenz spielen. 8,9 CAFs sind daher der Schlüssel zur Gestaltung von Eierstockkrebsmodellen.
Vorteile
High-Content-Screening und Instant Transfection helfen, 3D-Biodruck-Experimente zu charakterisieren und zu validieren • Instant Genexpression ist ein leistungsstarkes Werkzeug, um die Vielseitigkeit von 3D-Biodruck-Modellen zu erhöhen • Multi-Wellenlänge-Analysewerkzeuge sind notwendig, um die Leistungsfähigkeit von 3D-Biodruck-Modellen zu nutzen, um die Interaktionen verschiedener Zelltyp-Gruppen innerhalb des Modells zu untersuchen In dieser Anwendungsanweisung wird 3D-Biodruck verwendet, um Eierstockkrebsmodelle zu erstellen, die Krebszellen (SKOV3-Zellen) und CAF-Fibrozellen (MeWo-Zellen) enthalten. Transfektieren Sie SKOV3-Zellen mit jetOPTIMUS (Polyplus) GFP-Plasmoden und färben Sie MeWo-Zellen mit CellTracker und Orange CMRA Dye (ThermoFisher). Beide Zelltypen sind in Gelatin - Alginat - auf Hydrogel-Basis enthalten, um eine zylindrische tumorähnliche Struktur zu erhalten, die zur Bildung verwendet wird. Die Homophasität des Modells und die Wiederholbarkeit der Zellverteilung innerhalb dieser Tumoren wurden mit ImageXpress Pico bewertet.
Ergebnisse und Diskussionen
Wie in Abbildung 1 gezeigt, zeigt die Bioprint-Strukturbildgebung eine homogene Verteilung von SKOV3-Zellen, die GFP und fluoreszierende Färbung MeWo Zellen auf Gelatin-Alginat-Matrix (Abbildungen 1A und B) ausdrücken. Dies ist sehr wichtig, da homogene Zellverteilung gleichmäßig verteilt in Biotinte ein wichtiger Faktor ist, der beim 3D-Druck berücksichtigt werden muss 12 Darüber hinaus ist natürliche TME bekannt, dass es eine Vielzahl von Zelltypen enthält, die eng interagieren. 13 Daher ist es wichtig, dies zu reproduzieren und gleichzeitig in vitro-Tumormodelle aufzubauen, um die Wechselwirkungen zwischen Krebs und Matrixzellen zu fördern.
Während mehrere Zelltypen in Tumoren kombiniert werden sollten, um die TME-Heterogenität besser zu simulieren, müssen die Anzahl und der Anteil der einzelnen Zelltypen kontrolliert werden, um die Wiederholbarkeit zu gewährleisten. ImageXpress Pico eignet sich besonders für diese Art von Steuerung, da es schnell und einfach mehrere Mikroskopbilder aufnehmen kann. Die Software CellReporterXpress ermöglicht die Quantifizierung mehrerer Zellen, auch in dicken Proben, mit der maximalen Projektion des Z-Stacks. In dieser Anwendungsbeschreibung zeigt dieses System zur Analyse unserer biogedruckten Tumormodelle eine gute Wiederholbarkeit in Bezug auf Zellzahl und Verhältnis in sechs biogedruckten Strukturen mit einer durchschnittlichen Anzahl von SKOV3-Zellen (Zellzahl FITC) von 837 ± 200 (Standardabweichung ≤ 25%). Für MeWo-Zellen (Zellzahl TRITC) betrug die durchschnittliche Anzahl 3264,50 ± 462 (StD ≤ 15%).


Abbildung 1 Analyse der 3D-Bioprinter Struktur CMRA Farbstoff von SKOV3-Zellen mit transfizierten GFP-Plasmoden und MeWO-Zellen mit CellTracker Orange gefärbt. A) FITC- und TRITC-Bilder von 3D-Biodruckstrukturen in Loch B3, die mit dem ImageXpress Pico-System (4X, Z-Stack) erfasst wurden. B) Analyse der Masken der FITC- und TRITC-Zellzahl, die mit der CellReporterXpress-Software erstellt wurden. C) Die durchschnittliche Anzahl der Zellen in den FITC- und TRITC-Kanälen (5 Löcher, Färbung und Transfektion) und der negativen Kontrolle (3 Löcher, unfärbt und unfärbt) der Probe. D) Beurteilung der Transfektionseffizienz mit GFP Plasmid und jetOPTIMUS-Polyplus-Transfektion-Transfektion Kit (FITC-positive Zellen Prozentsatz / TRITC-positive Zellen).
Diese Anwendungsbeschreibung zeigt, dass die Visualisierung eine bestimmte genetische Struktur im Biodruck schnell beobachten kann. Eine sofortige Genexpression kann erreicht werden, die nach der Transfektion eines bestimmten Zelltyps der Biodruckstruktur durch einen Biodruck-Konstrukt in 3D integriert wird. Dies ist ein erheblicher Vorteil des 3D-Biodrucks im Vergleich zu anderen 3D-Kultivierungsmethoden, wie die Kultivierung von transfizierten Zellkugeln und Organoiden ist eine Herausforderung. In diesem vorläufigen Experiment wurde die Transfektionseffizienz auf 25% (StD 3,48%) geschätzt (Abbildung 1D). Weitere Optimierungen können z.B. durch die Verwendung von ImageXpress Pico erfolgen, um mehrere Konzentrationen von Transfektionsmischungen, DNA-Plasma-Partikelmengen und -zeiten zu screenen. Die Methode bietet auch die Möglichkeit, genetische Tests durchzuführen, Matrix und Schweigen und / oder Gene bearbeiten Zellen in Krebs. Zusammenfassend kombinierten wir Transfektion, Fluoreszenztbildgebung und Zellzahl, um 3D-gedruckte Eierstock-Tumormodelle mit Krebszellen und CAF zu charakterisieren und zu validieren. Wir können beweisen, dass die Nähe der beiden Zelltypen und ihrer Matrix die zelluläre Interaktion fördert. Diese Methode bietet die Möglichkeit, komplexere und vollständigere Tumormodelle mit kontrollierter und wiederholbarer Zellverteilung zu erstellen, ohne die Einschränkungen der Farbstoffpenetration, die in 3D-Modellen beobachtet werden. Daher können 3D-Biodrucktumormodelle schnell in Mikrofluidsysteme integriert werden. Anschließend können präklinische Modelle entwickelt werden, um mehr in-vitro-ähnliche Krebsmedikamente unter physiologischen Strömungen zu schaffen.

Materialien und Methoden
Hydrogel-Vorbereitung
Für die Hydrogel-Zubereitung, die gewünschte Qualität der Gelatine und Natrium-Alginat-Pulver gewogen, unter UV-Strahlung für 1 Stunde, dann gelöst in Dulbecco verbessert EagleMedium mit Lowest Essential Medium (MEM) gemischt, ergänzt mit 10% fetales Rinderseru. Die erhaltene Lösung wird dann über Nacht bei 37 ° C unter magnetischer Rührer gehalten und homogenisiert. Transfektion und Färbung von SKOV3-Zellen mit jetOPTIMUS (Polyplus) GFP-Plasmoden gemäß Anweisungen des Herstellers. Kurz gesagt, eine angemessene Menge an DNA wird auf den jetOPTIMUS-Puffer verdünnt und das jetOPTIMUS-Transfektionsreagens entsprechend hinzugefügt. Die Transfektionslösung wird 10 Minuten bei Raumtemperatur gelagert und dann zu den kultivierten SKOV3-Zellen hinzugefügt, die in einer T75-Flasche mit einer Fusionsrate von 60-80% kultiviert werden. Verwenden Sie den CellTracker Orange CMRA-Farbstoff (ThermoFisher), um MeWO-Zellen gemäß den Anweisungen des Herstellers zu färben. 11 Kurz gesagt, die Arbeitslösung wird in DMSO gelöst und dann in MEM-Medium verdünnt. Inkubieren Sie die Zellen bei 37 ° C für 30 Minuten. Entfernen Sie die Reagenzlösung und ersetzen Sie sie durch frische.fertigKulturmedium.


Abbildung 2 Abbildung der Methoden für den Biodruck und die Bildgebung der Modellstruktur von Eierstockkrebs.

Zellverpackung
Für die Bio-Tintenzubereitung werden die von der Pancreatase verdauten Zellen in frischem Medium wieder suspendiert und die zuvor vorbereitete Polymerlösung vorsichtig hinzugefügt. Die erhaltene langsame Rührsuspension zur homogenen Verteilung der Zellen in der Biotinte.
Biodruckprozess

Fügen Sie die fertige Biotinte in einen 3 ml Filter und den Biodruckkopf ein. Der Biodruck erfolgt in einer 24-Loch-Platte. Jeder 3 ml Filter Bio-Schlag etwa 48 Strukturen. Nach dem Biodruck, mit 100 mM CaCl2-Lösung Vernetzung Struktur, frisches Medium ergänzen und unter 37 ° C und 5% CO2-Bedingungen bis zum Experiment kultiviert.

Zellbildgebung

Übertragen Sie die Biodruckstruktur in eine 96-Loch-Platte (Greiner 655892, Glasboden, schwarze Wand). Mit dem automatischen Zellbildsystem ImageXpress Pico können Zellen mit 4X Objektiven abgebildet werden. Bilderfassung an jedem Loch mit Belichtungszeiten von jeweils 5, 150 und 250 ms über den durchlässigen Licht-, FITC- und TRITC-Kanal. Das 4X Objektiv macht etwa 40% der gesamten Lochfläche aus. Eine Kombination aus hardware- und bildbasierter Autofokussierung ergab sieben Z-Ebenen mit einem Abstand von 50 μm (Z-Schicht plus). Die maximale 2D-Projektion wird in Echtzeit erzeugt. Das vorkonfigurierte Zellzählanalyse-Modul in der Cell ReporterXpress-Software dient zur Quantifizierung von Zellen mit Signalen in FITC- oder TRITC-Kanälen. Die für die Analyse verwendeten Trennparameter sind Stärke, Mindestwerte und maximale Breite. Der Wert des FITC-Kanals ist 23, 7, 100 und der TRITC-Kanal ist 23, 7, 38.